細(xì)胞培養(yǎng)是細(xì)胞生物學(xué)研究方法中最常用也是最重要的技術(shù)之一，在現(xiàn)代醫(yī)學(xué)、生物科學(xué)、農(nóng)業(yè)科學(xué)等領(lǐng)域被廣泛應(yīng)用以提供研究模型和實驗材料。在細(xì)胞培養(yǎng)過程中，完全培養(yǎng)基對細(xì)胞生長狀態(tài)起到關(guān)鍵作用，決定實驗成功與否。而血清是完全培養(yǎng)基中的關(guān)鍵成分之一，除為細(xì)胞生長提供基本營養(yǎng)物質(zhì)、結(jié)合蛋白、一些參與解毒代謝的微量元素和可起到中和保護(hù)的酶類之外，還可以保護(hù)細(xì)胞免受機械損傷，因此被業(yè)內(nèi)認(rèn)為是細(xì)胞增殖過程中最重要的試劑。在生命科學(xué)領(lǐng)域的細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)中，動物血清的應(yīng)用十分廣泛，特別是牛來源血清。而牛源血清又分為胎牛血清、新生牛血清和小牛血清，它們的區(qū)別方式主要由于牛齡和采血方式不同，其中胎牛血清因其抗體水平含量低對后續(xù)實驗結(jié)果影響小、生長因子含量水平高利于細(xì)胞增殖而應(yīng)用最廣。因此關(guān)注胎牛血清的品級、質(zhì)量以及使用過程的一些注意事項，會對實驗結(jié)果起到直接影響作用，并可以確保科研人員在實驗操作過程中的安全性。

今天我們就來看看在細(xì)胞培養(yǎng)過程中血清使用方面常見的問題，如：血清儲存條件、如何程序解凍、細(xì)胞污染與血清之間的關(guān)系、傳說中的“黑膠蟲”是什么以及血清熱滅活是否有必要等等，“工欲善其事，必先利其器”，通過今天的解析與學(xué)習(xí)可以讓我們在做細(xì)胞培養(yǎng)相關(guān)實驗時事半功倍！那我們就開始吧~

Q1：血清長期儲存的條件和方法是什么？

A1：血清如需長期保存，則必須儲存于-10℃或更低溫冰箱中，建議存放于-20℃的冰箱中。研究表明儲存在-80℃條件下的血清在性能方面變化不大，但由于解凍時溫差過大，會導(dǎo)致析出更多沉淀，使得背景雜亂，因此血清長期保存不建議處于-80℃條件下。如果近期會頻繁使用血清，我們建議不要在4℃條件下存放超過1個月，若一次無法用完整瓶建議分裝后保存，且要避免反復(fù)凍融。另外，血清冰凍后體積會增加約10%，因此血清分裝時請留意預(yù)留一定的體積空間。

Q2：如何進(jìn)行血清的程序性解凍？血清才不會使產(chǎn)品質(zhì)量受損？

A2：程序性解凍血清可以確保血清制品質(zhì)量的穩(wěn)定性，且不會因為溫差過大而析出過多蛋白等沉淀。程序性解凍方法是于實驗開始之前將冷凍的血清置于4℃冰箱中融解，并且在解凍過程中每隔1小時搖勻一次，使溫度與成分均一，減少沉淀析出，直至全部解凍，然后再移入室溫條件下使用。

Q3：血清解凍后發(fā)現(xiàn)絮狀沉淀該如何處理？

A3：造成血清發(fā)生絮狀沉淀的原因主要是血清解凍過程中溫差帶來了脂蛋白變性和纖維蛋白析出，沉淀本身不會影響血清質(zhì)量，也不會對實驗結(jié)果造成影響。但如必須處理沉淀，則可通過離心方式去除，如500-1000×g離心5-10 min。

Q4：血清沉淀是什么？

A4：用于細(xì)胞培養(yǎng)的胎牛血清及其他血類制品中均存在各種類型的沉淀，如纖維蛋白和磷酸鈣等。一些絮狀沉淀主要就是纖維蛋白，通常我們?nèi)庋劭梢�，大小�?-2mm之間；而磷酸鈣在顯微鏡下觀察呈現(xiàn)布朗運動的小黑點，通常被誤認(rèn)為是微生物污染。血清沉淀往往比較難以預(yù)測和控制，但幸運的是這些沉淀不會影響血清品質(zhì)。

Q5：血清中的小黑點是“黑膠蟲”么？

A5：血清解凍過程溫差過大、經(jīng)反復(fù)凍融或通過熱滅活處理后更容易產(chǎn)生沉淀，這些沉淀物在鏡下觀察時有一些會呈現(xiàn)以布朗運動的小黑點，業(yè)內(nèi)流行一種“黑膠蟲”污染的說法，但“黑膠蟲”一直以來都是極為神秘的存在，至今科學(xué)家們也沒有完整的實驗結(jié)果可以證實它究竟是一種生物還是非生物，更有人認(rèn)為“黑膠蟲”是血清的原蟲，或誤以為是細(xì)菌或真菌污染。但科學(xué)家通過進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn)它們更可能是血清中的蛋白結(jié)晶。這種結(jié)晶可能為蛋白析出，如纖維蛋白原凝結(jié)成纖維蛋白；或是鹽析出，如磷酸鈣等；也有一些是膽固醇和脂肪酸。以下圖片就證實了這一說法，如纖維蛋白和磷酸鈣。

圖1：上圖分別為纖維蛋白在低倍鏡和高倍鏡下觀察到的圖像，下圖為磷酸鈣在低倍鏡和高倍鏡下觀察到的圖像（箭頭指示的是我們看到的“黑點”）

Q6：如何判斷血清污染？

A6：

（1）首先檢查并判斷外包裝是否有破損，一般瓶身破損的血清發(fā)生污染的可能性極大；

（2）將血清接種到血酯板上，培養(yǎng)后看是否有菌落形成；

（3）可通過質(zhì)量檢測試劑盒檢測結(jié)果判定，如支原體檢測試劑盒等。血清污染主要包括細(xì)菌污染、真菌污染和支原體污染。在細(xì)胞培養(yǎng)時想要確定血清存在細(xì)菌污染，可嘗試使用5-10倍濃度青鏈霉素雙抗沖擊培養(yǎng)24-48h；真菌污染的細(xì)胞無法搶救，應(yīng)立即將細(xì)胞瓶進(jìn)行高壓滅菌處理，并徹底消毒培養(yǎng)箱；支原體污染可考慮更換早期代次細(xì)胞，或使用商品化支原體去除試劑。

Q7：細(xì)胞形態(tài)不正常、生長狀態(tài)異�；蛟鲋乘俾示徛�是否與血清有關(guān)？

A7：細(xì)胞形態(tài)異常需要綜合關(guān)注細(xì)胞代次、傳代操作、培養(yǎng)基和血清等諸多因素。如傳代次數(shù)過多或傳代時間過晚都有可能影響細(xì)胞的生長狀態(tài)。有些細(xì)胞對血清具有一定適應(yīng)性，更換新批次血清時可能出現(xiàn)所含因子水平的差異而導(dǎo)致的細(xì)胞生長狀態(tài)受到影響的現(xiàn)象，可以通過血清梯度替換或者增加細(xì)胞適應(yīng)時間來解決此類問題。與此同時也要關(guān)注基礎(chǔ)培養(yǎng)基和傳代操作等方面是否存在一定問題。

Q8：如何做血清的梯度替換？

A8：當(dāng)細(xì)胞培養(yǎng)實驗需更換血清品牌時，做程序性梯度替換方案尤為重要，因為不同品牌的血清所含成分有所差異，血清更換會使細(xì)胞發(fā)生不適，從而出現(xiàn)細(xì)胞增殖緩慢或細(xì)胞狀態(tài)不佳等情況。建議的梯度替換方法為：完全培養(yǎng)基配置過程中先用25%新血清與75%原血清進(jìn)行混合，培養(yǎng)傳代1-2次；而后用50%新血清與50%原血清混合培養(yǎng)傳代；再用75%新血清與25%原血清混合培養(yǎng)傳代；最后完全使用新血清培養(yǎng)傳代。

Q9：培養(yǎng)基中添加血清和抗生素后可長期保存嗎?

A9：新鮮培養(yǎng)基中添加血清和抗生素后，建議在2周內(nèi)使用完。

Q10：血清的熱滅活是必須的嗎?

A10：實驗表明，經(jīng)熱滅活處理的血清對細(xì)胞生長可能僅有微小促進(jìn)或完全沒有任何作用，甚至通常因高溫處理而損失掉血清中部分營養(yǎng)成分從而影響血清質(zhì)量，造成細(xì)胞生長速率降低。熱滅活過程中因局部溫度過高、搖晃不均勻或滅活時間過長，都會造成血清品質(zhì)下降，且經(jīng)熱滅活后的血清會增加發(fā)生蛋白沉淀概率。因此，若非必須血清不需要做熱滅活，而少數(shù)對補體敏感的細(xì)胞實驗，如某些免疫學(xué)實驗或腺病毒包裝等，可酌情對血清進(jìn)行熱滅活操作。

Q11：血清熱滅活應(yīng)如何操作？

A11：

1.熱滅活前，必須先將解凍后的血清搖勻，并恢復(fù)至室溫；

2.取部分搖勻血清置于50ml離心管中，并準(zhǔn)備同規(guī)格對照管一個；

3.對照管內(nèi)加入血清等體積水；

4.對照管內(nèi)插入溫度計進(jìn)行溫度預(yù)試，當(dāng)溫度達(dá)到 56℃時將恢復(fù)至室溫的血清放入水浴鍋30min；

5.滅活過程中需要每隔5min輕輕晃動搖勻，以保證溫度均一。

Q12：血清為什么存在批間差？

A12：血清批間差是客觀存在的，因為血清制品來源于天然活體，供體牛只的生理狀況、健康狀況均不同，且受飼養(yǎng)環(huán)境的地形、風(fēng)貌、飲食、水源等影響，體內(nèi)各類蛋白、生長因子和酶類的含量均有巨大差異，所以血清具有含量復(fù)雜且不固定的特性，批間差異在所難免，因此批間差異小的血清不僅可以保證血清質(zhì)量，確保細(xì)胞培養(yǎng)效果，還能減少由于批間差異帶來的使用前測試，且避免實驗結(jié)果的不可重復(fù)性。