摘 要:從鱈魚表皮和內(nèi)臟的混合菌群中分離純化出能夠穩(wěn)定代謝氧化三甲胺(TMAO)的腐敗希瓦氏菌(Shewanella putrefaciens)Y0612。使用非抑制性離子色譜對腐敗希瓦氏菌代謝TMAO 的能力進行了分析,研究菌株對TMAO 的代謝規(guī)律。確定Y0612 對TMAO 的還原沒有受氧氣的抑制,在有氧條件下比厭氧條件下對TMAO 還原效果更好;溫度為15~35℃之間TMAO 的代謝率隨著溫度升高而略有升高。在水產(chǎn)品的加工中,通過SSOP 保持衛(wèi)生的操作,減少與氧氣的接觸,對環(huán)境溫度進行控制, 對于該菌均有一定的抑制作用,減少水產(chǎn)品的腐敗。
氧化三甲胺 (trimethylamine-N-oxide,TMAO) 分子式為 (CH3)3NO,廣泛分布于海產(chǎn)硬骨魚類的肌肉中[1],是許多海洋魚類的肌肉中非蛋白氮的重要組成部分,具有特殊的鮮味[2]。在貯藏及運輸過程中,TMAO 在環(huán)境微生物和水產(chǎn)品自身內(nèi)源性酶的作用下[3],降解產(chǎn)生三甲胺(TMA),進而生成二甲胺(DMA)和甲醛(FA)等[4]。
1.1.3 培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨5,酵母膏1,NaCl 15,F(xiàn)eCl3 0.01, pH7.2~7.5,121℃滅菌20min;TMAO 經(jīng)0.22μm 濾膜過濾后按2.0 mg/ml 的終濃度添加。Biolog 培養(yǎng)基成分參照謝家儀[17]。
超凈臺上,取鱈魚表皮和內(nèi)臟適量,經(jīng)無菌研缽研磨后, 置于含100ml 無菌生理鹽水的三角瓶內(nèi),170r/min,25℃振蕩培養(yǎng)1h。取10ml 上述菌體原液,接種到含有100ml 富集培養(yǎng)基的錐形瓶中,170r/min,25℃振蕩培養(yǎng)24h。梯度稀釋上述培養(yǎng)液,涂布平板后,在適宜條件下培養(yǎng)24h,依據(jù)平板的菌落數(shù),選恰當稀釋度且生長狀況良好的菌為對象,進行菌種的分離。選取不同特性的菌落,進行多次反復的劃線培養(yǎng),直至菌種純化。
取菌株種子液5ml 接種到250ml 三角瓶中,瓶內(nèi)添加100ml 含TMAO 2.0 mg/ml 的2216E 培養(yǎng)基,分別采用170r/ min 振蕩培養(yǎng)和靜置培養(yǎng)的方法分析有氧和厭氧條件下細菌的代謝能力,培養(yǎng)溫度25℃,每隔2h 取樣一次,按照1.2.2 方法進行檢測;同時用分光光度計在660nm 處測吸光值,作為菌株生物量測定的參考值。
取Y0612 種子液5ml 接種到100ml 含TMAO 2.0 mg/ ml 的培養(yǎng)基中,分別于15℃、25℃、35℃,170r/min,振蕩培養(yǎng)24h,每隔一定時間取樣,按照1.2.2 方法進行檢測;同時測定菌液660nm 的吸光值。
根據(jù)菌株代謝TMAO 的離子色譜分析結果,做出發(fā)酵24h 時TMA 與TMAO 的含量變化曲線,如圖1 所示。
發(fā)酵進行4h 時,非抑制型離子色譜檢測到了TMA 的產(chǎn)生, 進行24h 時TMAO 含量已產(chǎn)生較大幅度的下降,降解率相當于初始含量的70%。
對腐敗希瓦氏菌在15℃、25℃、35℃條件下培養(yǎng)24h 后, 對發(fā)酵液中細菌生物量和TMAO、TMA 含量的檢測結果分別如圖4 和圖5 所示。溫度為15℃ ~35℃之間TMAO 的代謝率基本上隨著溫度升高而略有升高。
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腐敗希瓦氏菌導致水產(chǎn)品腐敗的原因探析.pdf